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[转载]黄酮物质在植物非生物胁迫中的作用

已有 87 次阅读 2025-7-16 09:23 |系统分类:科研笔记|文章来源:转载

类黄酮(Flavonoids)是植物次生代谢产物中一类具有C6-C3-C6结构的化合物,广泛分布于植物的叶、花、果实等组织中。已知的几种类黄酮如花青素、黄酮醇和黄烷-3-醇,以多种方式促进植物的生长和生存。在被子植物中,花青素能促进花粉与柱头的相互作用,吸引传粉昆虫和(并)促进果实扩散。黄酮醇可作为植物的紫外线保护剂和天然生长素运输调节剂。黄烷-3-醇在植物的各种组织中积累,可以防止植物被捕食。同时,黄烷-3-醇会使葡萄酒、果汁和茶品等饮料具有涩味和风味。黄烷-3-醇也是影响饲料作物的主要质量因素,且逐渐被认为是有益于健康的化合物。黄酮类化合物还具有防止紫外线照射、抵御病原真菌和食草动物等功能。类黄酮还参与植物和共生菌根真菌之间的相互作用。另外,类黄酮可能由于可以清除自由基而具有抗氧化的特性。黄酮类化合物的结构与抗氧化活性的关系已经进行了大量的研究,以确定它们在适应环境胁迫条件中发挥的作用。不同的环境条件,尤其是非生物胁迫,刺激了类黄酮在植物营养组织和器官中的积累。据报道,缺水可上调类黄酮的含量,并根据胁迫条件进行调节。类似的,还发现植物在应对寒冷、干旱和盐胁迫等多种非生物胁迫反应时,类黄酮的水平会增加。此外,盐胁迫还引起植物中的类黄酮发生变化。总之,植物在各种胁迫条件下往往会积累类黄酮化合物。本文综述了各种非生物胁迫下,类黄酮对植物保护作用。

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一、类黄酮在植物非生物胁迫的作用

它们在植物应对非生物胁迫(如紫外线、干旱、高温、盐碱等)中发挥多重保护作用,以下是其具体机制和功能的总结:

1. 抗氧化与活性氧(ROS)清除

类黄酮是植物体内重要的抗氧化剂,能够直接清除因胁迫产生的过量活性氧(如超氧阴离子、过氧化氢等),减轻氧化损伤。例如:

• 紫外线(UV-B)胁迫:木犀草素等类黄酮在叶片表皮细胞积累,通过吸收UV-B辐射并中和ROS,保护叶绿体免受光氧化损伤。

• 干旱与盐胁迫:黄酮类化合物(如槲皮素)通过提高抗氧化酶(SOD、CAT)活性,维持细胞氧化还原平衡,缓解渗透胁迫导致的膜脂过氧化。

2. 渗透调节与细胞稳态维持

在干旱或盐碱胁迫下,类黄酮可通过以下途径帮助植物适应:

• 渗透保护:促进渗透调节物质(如脯氨酸、可溶性糖)的积累,降低细胞渗透势,维持水分吸收。

• 膜稳定性:通过抑制脂质过氧化,保护细胞膜结构的完整性,减少离子泄漏。

3. 紫外线过滤与光保护

类黄酮(如花青素、黄酮醇)在植物表皮层形成“防晒屏障”,吸收有害的UV-B辐射,减少DNA和光合系统的损伤。例如:

• 牡丹和野罂粟的花色差异与类黄酮分布相关,其积累可增强UV抗性。

4. 温度胁迫响应

• 高温:类黄酮通过稳定热敏感蛋白和酶活性,减少高温诱导的蛋白质变性。

• 低温:某些类黄酮(如二氢槲皮素)通过调节脱落酸(ABA)信号通路,增强抗冻性,抑制冰晶形成。

5. 金属与盐碱胁迫缓解

• 重金属胁迫:类黄酮可通过螯合重金属离子(如Cd²⁺、Pb²⁺),减少其毒性。

• 盐胁迫:F3'H基因(类黄酮-3'-羟化酶)的激活促进槲皮素等产物的合成,增强植物耐盐性。

6. 分子调控与信号转导

类黄酮参与植物激素(如生长素、ABA)的调控,影响胁迫相关基因表达。例如:

• F3'H基因在干旱或盐胁迫下表达上调,通过合成羟基化黄酮(如槲皮素)激活抗逆通路。

• 类黄酮与ROS信号互作,调节气孔关闭以减少水分流失。

二、黄酮物质合成

备注:4CL,4-香豆酸辅酶A连接酶;ANR,花青素还原酶;ANS,花青素合酶;C4H,查耳酮4-水解酶;CHI,查耳酮异构酶;CHR,查耳酮还原酶;CHS,查耳酮合酶;DFR,二氢黄酮醇4-还原酶;F3H,黄烷酮3羟化酶;F3'H,类黄酮3‘羟化酶;F3',5'H,类黄酮8‘,5'-羟化酶;FLS,黄酮醇合酶;FS1,黄酮合酶1;FS2,黄酮合酶2;GT,糖基转移酶;IFS,异黄酮合酶;LAR,无色花青素还原酶;PAL,苯丙氨酸解氨酶。

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三、类黄酮物质响应的基因

序列基因积累的类黄酮种类非生物胁迫参考文献
1FLS黄酮醇盐、干旱[1]
2PAL暂无干旱[2]
3IbDFR花青素低温[3]
4SIF3HL类黄酮3-羟化酶低温[4]
5LDOX花青素[5]
6RsF3H花青素干旱[6]
7LcF3H黄烷-3-醇干旱[7]
8AtMTB12总黄酮含量盐、干旱[8]

四、相关检测指标

1.总黄酮含量 5.原花青素含量

2.异黄酮含量 6.总酚含量

3.单宁含量 7.鞣花酸含量

4.花青素/花色苷含量 8.总黄烷醇含量

[1]Nguyen N H,Kim J H,Kwon J,et al.Characterization of Arabidopsis thaliana flavonol synthase 1(FLS1)-overexpression plants in response to abiotic stress[J].Plant Physiology and Biochemistry,2016(103):133-142.

[2]Huang J,Gu M, Lai Z,et al. Functional analysis of the Arabidop-sis PAL gene family in plant growth,development,and response to environmental stress[J].Plant Physiology,2010(153):1526-

1538.

[3]Wang X,CaiJ,Liu FL,et al.Multiple heat priming enhances thermo-tolerance to a later high temperature stress via improving subcellu-lar antioxidant activities in wheat seedlings [J].Plant Physiology and Biochemistry,2014(74):185-192.

[4]Meng C,Zhang S,Deng YS,et al. Overexpression of a tomato flavanone 3-hydroxylase-like protein gene improves chilling tolerance in tobacco[J].Plant Physiology and Biochemistry,2015 (96):388-400.

[5]Van O M J,SharkhuuA,et al. The Arabidopsis thaliana mutant airl implicates SOS3 in the regulation of anthocyanins under salt stress [J].Plant Molecular Biology,2013 (83):405-415.

[6]Liu M, Li X,LiuY,et al. Regulation of flavanone 3-hydroxylase gene involved in the flavonoid biosynthesis pathway in response to UV-B radiation and drought stress in the desert plant,Reaumuria soon-gorica[J].Plant Physiology Biochemistry,2013(73):161-167.

[8]Song X,Diao J,JiJ,et al.Molecular cloning and identification of a flavanone 3-hydroxylase gene from Lycium chinense, and its overex-pression enhances drought stress in tobacco[J].Plant Physiology and Biochemistry,2016(98):89-100.

[9].植物适应非生物胁迫的代谢组学研究。

[10]Wang L M, Jin X,Li Q B,et al.Comparative proteomics reveals that phosphorylation of β carbonic anhydrase 1 might be important for adaptation to drought stress in Brassica napus[J].Scientifc Re-ports,2016(6):39024.

[11]Zeng X , Yuan H , Dong X ,et al.Genome-wide dissection of co-selected UV-B responsive pathways in the UV-B adaptation of qingke.Cell Press, 2020(1).DOI:10.1016/j.molp.2019.10.009.



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