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AbMole小课堂:Heparin在抗凝、抗炎、铁调素抑制方面的作用

已有 252 次阅读 2026-2-11 14:57 |系统分类:科研笔记

Heparin(Sodium heparinate,肝素钠,AbMole,M5688)是一种复杂的糖胺聚糖,广泛存在于哺乳动物的组织中,尤其是肝脏和肺部。Heparin具有丰富的生物学功能,可用于抗炎、抑制凝血因子、抑制铁调素表达、动物模型研究。

一、Heparin的结构与功能

1.Heparin(肝素)的结构

Heparin(Sodium heparinate,肝素钠,AbMole,M5688)属于糖胺聚糖家族,是一类复杂的生物大分子。其基本组成单元是由重复的二糖单位构成,这些二糖单位通常包含一个己糖胺(如 D - 葡萄糖胺)和一个糖醛酸(如 L-艾杜糖醛酸或D-葡萄糖醛酸)。在Heparin的结构中,最为普遍的是磺酸化修饰,这种修饰赋予了Heparin强烈的负电性。

图 1. (A)Heparin中重复的二元结构和(B)Heparin的五糖序列

2.Heparin(肝素)抑制凝血因子

Heparin(Sodium heparinate,肝素钠,AbMole,M5688) 是一种动物实验广泛使用的可注射抗凝血剂,常用于实验动物血液采集和血浆制备,其原理是基于 Heparin 的磺酸基团与 AT-III 分子表面相应氨基酸残基之间精确的静电相互作用和结合。这种结合能够诱导 AT-III 构象发生变化,极大地增强其对凝血酶等凝血因子的抑制活性,从而发挥抗凝血功能。

3.Heparin(肝素)具有抗炎作用

Heparin(Sodium heparinate,肝素钠,AbMole,M5688) 在炎症反应中也表现出显著的抑制作用。研究表明,Heparin能够通过阻断高迁移率族蛋白B1(HMGB1)与巨噬细胞表面的结合,抑制由脂多糖(LPS)和HMGB1诱导的炎症反应[1]。此外,Heparin还能抑制caspase-11依赖的炎症反应[1]

4.Heparin(肝素)对铁调素的抑制作用

Heparin(Sodium heparinate,肝素钠,AbMole,M5688) 还被发现具有抑制铁调素(hepcidin)表达的活性。铁调素是一种调节全身铁代谢的关键激素,其表达主要由骨形态发生蛋白(BMPs)调控。Heparin通过抑制BMPs激活的SMAD1/5/8蛋白磷酸化,从而抑制铁调素的表达。这种抑制作用在体外细胞实验和体内小鼠模型中均得到了证实[2]

5.Heparin(肝素)用于动物模型研究

在动物模型中,Heparin的抗凝特性被用于研究血栓形成模型或抗凝功能缺陷模型[3]。例如,在兔静脉血栓模型和小鼠颈动脉血栓模型中,Heparin被证明可以显著减少血栓形成,即使在抗凝血酶活性较低的情况下[3, 4]。这些研究均表明Heparin在动物模型中可用于探究血栓形成和抗凝机制。Heparin还可以用于构建小鼠肠外营养模型。例如,在一项研究中,通过颈静脉插管的方式,将含有Heparin的肠外营养液(PN)输注到小鼠体内[5]。Heparin在上述模型中的主要作用是防止导管内血栓形成,从而确保导管的通畅性。

二、范例详解

1.Int J Biol Macromol. 2023 Dec 31;253(Pt 6):127352.

江苏大学的科研人员在上述文章中研究了糖胺聚糖(Glycosaminoglycans, GAGs),特别是肝素硫酸(Heparan Sulfate, HS)和软骨素硫酸(Chondroitin Sulfate, CS),在家蚕核型多角体病毒(Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus, BmNPV)感染过程中的作用。研究发现,这些糖胺聚糖是BmNPV感染和复制的重要附着因子,其存在与否直接影响病毒的感染效率。上述论文的Heparin(Sodium heparinate,肝素钠,AbMole,M5688) 由AbMole提供[6]

图 2. 外源性Heparin对BmNPV感染的中和作用[6]

2.Int J Nanomedicine. 2020 Aug 28;15:6519-6529.

广州医科大学、中山大学的研究者们在上述论文中探究了碳量子点(Carbon Quantum Dots, CQDs)在体外和体内环境中的生物相容性和生物相互作用,特别是其在光学成像中的应用。在动物实验中,实验人员采集了小鼠眼球血进行了中性粒细胞ROS水平、外周血中CD标志物表达等指标的分析,在取血过程中,使用了AbMole的Heparin(Sodium heparinate,肝素钠,AbMole,M5688) 作为抗凝剂。

图 3. 小鼠眼球取血后,评估量子点的生物相容性[7]

参考文献

[1] Y. Song, Y. Wu, F. Ding, S. Li, Y. Shen, B. Yang, X. Tang, L. Ren, L. Deng, X. Jin, Y. Yan, The Preventive and Therapeutic Effects of Acute and Severe Inflammatory Disorders with Heparin and Heparinoid, Biomolecules 14(9) (2024).

[2] M. Poli, M. Asperti, P. Ruzzenenti, A. Naggi, P. Arosio, Non-Anticoagulant Heparins Are Hepcidin Antagonists for the Treatment of Anemia, Molecules 22(4) (2017).

[3] S.A. Mousa, In Vivo or Ex Vivo Models for Testing Thrombosis and Hemostasis, Drug Discovery and Evaluation: Pharmacological Assays2015, pp. 1-43.

[4] S. Momi, M. Nasimi, M. Colucci, G.G. Nenci, P. Gresele, Low molecular weight heparins prevent thrombin-induced thrombo-embolism in mice despite low anti-thrombin activity. Evidence that the inhibition of feed-back activation of thrombin generation confers safety advantages over direct thrombin inhibition, Haematologica 86(3) (2001) 297-302.

[5] L. Zhan, I. Yang, B. Kong, J. Shen, L. Gorczyca, N. Memon, B.T. Buckley, G.L. Guo, Dysregulation of bile acid homeostasis in parenteral nutrition mouse model, Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol 310(2) (2016) G93-g102.

[6] W. Zhou, J. Hong, J. Han, F. Cai, Q. Tang, Q. Yu, G. Li, S. Ma, X. Liu, S. Huo, K. Chen, F. Zhu, Silkworm glycosaminoglycans bind to Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus and facilitate its entry, Int J Biol Macromol 253(Pt 6) (2023) 127352.

[7] X. Tian, A. Zeng, Z. Liu, C. Zheng, Y. Wei, P. Yang, M. Zhang, F. Yang, F. Xie, Carbon Quantum Dots: In vitro and in vivo Studies on Biocompatibility and Biointeractions for Optical Imaging, Int J Nanomedicine 15 (2020) 6519-6529.



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