突破性的免疫细胞基因传递技术

嗯，用户问的是关于突破性的免疫细胞基因传递技术，我需要根据提供的搜索结果来整理答案。

首先，看看各个网页的信息。网页1提到新加坡国立大学开发了NExT技术，利用纳米结构和

电脉冲高效转染免疫细胞，这对CAR-T治疗成本降低有帮助。这应该是重点，要详细说明技术

原理和优势。网页3和网页7分别讨论了基因编辑技术如先导编辑和西湖大学的EASY递送系统，

但用户的问题更偏向于传递技术而非编辑，所以可能次要。网页5和10涉及CAR-T和NK细胞疗法，

但更侧重于治疗应用，可能作为补充。

网页8提到智能CAR-T细胞，虽然相关，但主要是治疗

方法的改进，不是传递技术本身。网页9的纳米疫苗可能不太相关。需要整合网页1的NExT技术，

结合其他如西湖大学的EASY系统（网页7）作为其他突破。可能还要提到邦耀生物的异体CAR-T

（网页5）中用到的基因编辑技术，但这里的传递技术可能属于基因编辑的一部分。需要确认

各个技术是否属于传递技术的范畴。

例如，NExT和EASY都是递送系统，属于传递技术。

先导编辑是编辑技术，可能不算传递。溶瘤病毒（网页4、6）是另一种疗法，可能不直接相关。

总结下来，主要的技术突破是NExT和EASY，再补充其他相关进展如智能CAR-T和现货型

NK细胞疗法中的传递方法。注意引用正确的编号，如网页1、7、8、5、3等。要确保每个

引用都准确对应到对应的技术，避免混淆。可能需要分点回答，每点一个技术，详细说明

其原理、优势和应用。

以下是关于近期突破性免疫细胞基因传递技术的综合介绍，结合了多个研究进展和应用案例：

1. 纳米秸秆电致转染技术（NExT）

新加坡国立大学研发的NExT平台通过微米级空心纳米结构与温和电脉冲的结合，高效递送

mRNA、CRISPR工具等生物分子至免疫细胞（如T细胞、NK细胞等）。其核心优势包括： 高转染效率：原代T细胞中蛋白质转染效率达94%，mRNA效率超80%，且细胞功能

（增殖、迁移等）未受显著影响1。 多细胞适用性：支持γδ T细胞、树突状细胞等传统难转染的免疫细胞类型，适用于CAR-T疗法

的大规模生产，降低制造成本1。 安全性提升：相比病毒载体和高压电穿孔，NExT减少细胞损伤和免疫原性风险，更适用于异体治疗开发1。

2. 哺乳动物蛋白凝聚体递送系统（EASY）

西湖大学开发的EASY系统利用天然蛋白凝聚体机制，实现非病毒、非脂质体的核酸递送，特点包括： 超高载量：核酸装载能力是脂质纳米颗粒（LNP）的50倍，可递送质粒DNA、mRNA及CRISPR工具7。 广谱细胞适配性：在原代T细胞、NK细胞等难转染细胞中，基因编辑效率达67%-88%，

且细胞毒性显著低于传统电转法7。 代谢安全性：载体蛋白通过细胞天然代谢途径降解，减少长期毒性风险7。

3. 智能超声控制CAR-T细胞（EchoBack CAR-T）

南加州大学团队开发的EchoBack CAR-T通过聚焦超声激活，延长细胞攻击时间至普通CAR-T的5倍，

并增强实体瘤穿透能力： 精准控制：超声脉冲触发CAR-T激活，仅在肿瘤微环境中释放杀伤分子，保护正常组织8。 持久疗效：单次治疗后持续作用5天以上，减少患者频繁就医需求，已在胶质母细胞瘤等模型中验证有效性8。

4. 异体通用型CAR-T技术（TyU19）

邦耀生物基于CRISPR/Cas9开发的TyU19通过多重基因编辑（敲除TRAC、HLA等基因），

解决异体CAR-T的排斥与GVHD风险： 高安全性：临床试验中无严重CRS或神经毒性，仅需低强度清淋方案5。 快速可及性：作为“现货型”产品，单批次可治疗200例患者，显著缩短制备周期，已成功应用于

系统性红斑狼疮等自身免疫病治疗5。

5. 先导编辑技术的临床突破

Prime Medicine的先导编辑疗法PM359首次在人体试验中修复慢性肉芽肿病患者的免疫细胞功能： 精准修复：无需DNA模板，成功修复两碱基缺失突变，恢复66%的中性粒细胞功能3。 广谱潜力：理论上可修正89%的已知致病突变，未来或用于CAR-T优化及遗传病治疗3。

总结与展望

当前免疫细胞基因传递技术的突破主要集中在高效递送方法（如NExT、EASY）、精准编辑工具

（如先导编辑）及智能控制技术（如超声激活CAR-T）。这些进展不仅提升了治疗效果和安全性，

还通过标准化生产（如异体CAR-T、现货型NK细胞10）降低了成本，推动个性化医疗向普惠化发展。

未来，技术整合（如递送系统+基因编辑）和联合疗法（如溶瘤病毒+免疫细胞46）将进一步拓展应用场景。