AbMole的个人博客分享 http://blog.sciencenet.cn/u/AbMole

博文

AbMole丨重组白细胞介素4(IL-4,Interleukin-4):驱动淋巴细胞和先天免疫细胞定向分化的关键工具

已有 205 次阅读 2026-3-4 15:28 |系统分类:科研笔记

白细胞介素(IL-4Interleukin-4)是免疫系统一种重要调节因子,参与感染、过敏、自身免疫和癌症等多种免疫反应。而重组IL-4(重组白介素4AbMoleM10465)为免疫细胞的培养和分化诱导,以及细胞和动物实验提供了重要工具。

一、IL-4Interleukin-4)的作用机理

白细胞介素-4Interleukin-4, IL-4)是一种由活化的T细胞、肥大细胞、嗜碱性粒细胞等分泌的多效性细胞因子。IL-4Recombinant Interleukin-4重组白介素4AbMoleM9363)通过与其特异性受体白细胞介素-4受体(interleukin-4 receptorIL-4R复合物结合行使功能。受体主要有两种类型:I型受体和II型受体。IL-4与受体结合后,受体相关的Janus激酶(JAK1JAK3)发生磷酸化并被激活。激活的JAKs进而磷酸化IL-4受体链上的酪氨酸残基,为信号转导与转录激活因子6STAT6)提供锚定位点。STAT6被招募至受体并被JAKs磷酸化,磷酸化的STAT6形成同源二聚体,转运至细胞核内,与特定基因启动子区域的元件结合,调控下游基因(如Arg1, CD23, SOCS1)的转录。IL-4也可激活胰岛素受体底物(IRS/PI3K通路和MAPK通路,共同协调细胞的存活、增殖和代谢重编程[1]

二、IL-4(白介素4)的科研应用

1. IL-4(白介素4)用于T细胞的分化研究

T细胞的发育和功能研究,重组IL-4蛋白(Recombinant Interleukin-4AbMoleM10465)发挥着至关重要的作用。大量研究表明,IL-4Th2分化的关键调控因子,可直接驱动初始CD4+ T细胞(Th0)向Th2谱系分化[2]。这一过程伴随着Th2特征性细胞因子(如IL-4IL-5IL-13)的分泌,并依赖转录因子GATA3的上调。需要注意的是IL-4在体外诱导TH2谱系分化的实验中,一般需联合抗CD3/CD28抗体(目的是提供TCR信号)一同使用[3]。研究显示,降低CD3抗体的浓度(弱TCR刺激)会显著抑制Th2扩增[3]

2. IL-4(白介素4)用于B细胞的增殖和类别转换

重组 IL-4 蛋白(Recombinant IL-4AbMoleM10018)在 B 细胞的增殖和类别转换等方面同样展现出不可或缺的作用。例如单独使用 IL-4 可明显增加外周血单核细胞的增殖活性。并且IL-4可通过上调CD23CD40B细胞分化为IgG分泌性浆细胞的关键标记)促进浆细胞分化[4]IL-4 在结合多种共刺激剂(包括抗 IgM、金黄色葡萄球菌 cowan 菌株)的情况下,可促进B细胞产生IgMIgG1 和 IgE[5]IL-4还可驱动B细胞向IgG1IgE分泌型细胞的类别转换,该实验一般需要同时使用IL-4IL-21处理细胞,其中IL-4促进上述转换和增殖扩增,而IL-21 则进一步放大IgEB细胞的增殖[6]

3. IL-4Interleukin-4)用于巨噬细胞极化的研究

巨噬细胞是免疫系统中的重要抗原呈递细胞和先天免疫细胞,在免疫应答的启动和调节过程中发挥着关键作用。巨噬细胞存在两种亚型,即M1型(经典激活型)和M2型(替代激活型)。其中M1巨噬细胞是促炎表型,可分泌促炎细胞因子(如IL-1βTNF-α)进一步加强免疫反应;而M2巨噬细胞则是抗炎/促修复表型,主要分泌IL-10等抗炎因子并抑制免疫系统。M1/M2表型比例的失调与多种疾病高度相关[7]IL-4(重组IL-4蛋白,AbMoleM9363)是诱导M2型巨噬细胞极化的关键细胞因子。研究表明,IL-4通过激活STAT6信号通路,上调M2标志物(如Arg1CD206IL-10等),同时抑制M1型巨噬细胞的炎症因子(如TNF-αIL-6[8, 9]。有研究表明Herpud1基因的抑制会降低IL-4诱导的M2极化效率,而TRAF6可通过稳定STAT6蛋白增强IL-4信号传导促进M2极化[10]。此外,在体外培养中,IL-4IL-13 表现出协同效应,二者联合可进一步增强M2细胞的极化[11, 12]

4. IL-4Interleukin-4)用于树突状细胞的分化诱导

树突状细胞(Dendritic Cells, DCs)是免疫系统中一类多功能抗原呈递细胞(APCs),在连接先天免疫和适应性免疫中发挥核心作用。IL-4(重组 IL-4 蛋白,AbMoleM10465)可用于树突状细胞的分化诱导。例如IL-4与粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF)联合使用,可诱导单核细胞分化为未成熟树突状细胞(iDC)。实验表明,使用50 ng/mL GM-CSF20 ng/mLIL-4处理人外周血单个核细胞(PBMCs),3天后可观察到显著的树突状细胞分化[13]

5. IL-4在动物模型中的应用

在动物模型中,通过腹腔注射或气道吸入重组IL-4蛋白(Recombinant Interleukin-4AbMoleM10018),可模拟Th2细胞因子高表达的环境,用于研究免疫应答机制。这种处理方式能够显著提高动物体内IL-4的水平,从而模拟Th2细胞因子高表达的环境[14]。在这些模型中,重组IL-4蛋白能够显著促进Th2细胞的分化和功能,表现为IL-4IL-5IL-13Th2型细胞因子的高水平表达。此外,重组IL-4蛋白还能够影响B细胞的增殖和抗体分泌,特别是IgE的产生。重组 IL-4 蛋白在自身免疫性疾病动物模型同样具有重要价值例如有文献采用胶原诱导关节炎(CIA)大鼠模型,在模型构建过程中,向大鼠体内注射重组 IL-4 蛋白,以增强模型的炎症反应[15]

三、范例详解

1. Eur J Med Res. 2025 Apr 11;30(1):271.

南方科技大学、中山市人民医院的实验人员在上述论文中探究了M2巨噬细胞来源的外泌体(M2φ-exos)对 TGF-β1 诱导的人支气管上皮细胞(BEAS-2B)上皮间质转化(EMT)的调控作用及分子机制。研究通过诱导 THP-1 细胞分化为 M2 巨噬细胞并分离其外泌体,发现 M2φ-exosM2巨噬细胞衍生的外泌体)可被 BEAS-2B 细胞摄取,通过抑制 TGF-βRI/Smad2/3 信号通路,逆转 TGF-β1 诱导的 EMT(表现为下调 SnailVimentinCollagen 1 的表达,上调 E-cadherin 的表达),而外泌体释放抑制剂 GW4869 可阻断这一作用,TGF-βRI 抑制剂 SB431542 与 M2φ-exos 联合使用时效果更显著。在上述实验中,科研人员使用了AbMole的重组IL-4Recombinant Interleukin-4IL-4HumanAbMoleM9363目的是诱导 THP-1 细胞向 M2 巨噬细胞极化。具体来说,THP-1 细胞先经佛波酯(PMA)诱导为 M0 巨噬细胞,再通过 PMA 联合 20 ng/mL IL-4 进一步诱导 36 小时,使其分化为具有 M2 表型的巨噬细胞(通过流式细胞术检测到 CD206 表达显著升高,证实极化成功)。

 1. Characterization of M2 macrophages[16].

2. Immun Inflamm Dis. 2023 Sep;11(9):e1011.

温州医科大学的科研团队在该文章中,探究了携带小鼠成纤维细胞活化蛋白 -αFAP)和人 livin α 基因的重组腺病毒载体(rAd-FAP/hlivin α)感染树突状细胞(DCs)对小鼠 Lewis 肺癌(LLC)的抗肿瘤作用。研究构建了 rAd-FAPrAd-hlivin α 及 rAd-FAP/hlivin α,将其转导至小鼠 DCs 后,免疫 LLC 荷瘤小鼠,发现双基因修饰的 DCs 可显著抑制肿瘤体积、提高生存率,并增强脾淋巴细胞对肿瘤相关成纤维细胞(CAFs)的细胞毒性作用。机制上,FAP 在 CAFs 中高表达,livin α 在 LLC 中上调,双基因修饰的 DCs 通过靶向这两个分子,改善肿瘤免疫微环境,发挥协同抗肿瘤效应。在实验中,科研人员使用了来自AbMole3款产品:IL‐4Recombinant Interleukin-4IL-4AbMoleM10465Mitomycin C(丝裂霉素CAbMoleM5791)和IL‐2Recombinant Interleukin-2AbMoleM19999)。其中IL-4 的作用是促进树突状细胞(DCs)的体外培养与分化。具体来说,从小鼠骨髓中获取的 DCs 在含 20 ng/mL 粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF)和 20 ng/mL 重组小鼠 IL-4 的完全培养基中培养,以支持 DCs 的生长、分化和成熟,为后续感染重组腺病毒载体奠定基础[17]IL-2(白细胞介素-2)在上述研究中主要用于增强脾淋巴细胞对CAFs的细胞毒性效应。丝裂霉素 的作用则是作为细胞增殖抑制剂,用于处理 CAFs 以阻止其增殖从而确保实验中检测到的细胞毒性效应仅来源于淋巴细胞对 CAFs 的特异性杀伤。

 2. The antitumor effect of rAd‐FAP/hlivin α‐ ransduced DCs on LLC in mice[17]

参考文献及鸣谢

[1] S. P. Mehrbani, P. Motahari, F. P. Azar, et al., Role of interleukin-4 in pathogenesis of oral lichen planus: A systematic review, Medicina oral, patologia oral y cirugia bucal 25(3) (2020) e410-e415.

[2] M. T. Hassan, H. Tayara, K. T. Chong, Meta-IL4: An ensemble learning approach for IL-4-inducing peptide prediction, Methods (San Diego, Calif.) 217 (2023) 49-56.

[3] A. Kandel, L. Li, Y. Wang, et al., Differentiation and Regulation of Bovine Th2 Cells In Vitro, Cells 13(9) (2024).

[4] D. Dijkstra, A. Meyer-Bahlburg, Human Basophils Modulate Plasma Cell Differentiation and Maturation, Journal of immunology (Baltimore, Md. : 1950) 198(1) (2017) 229-238.

[5] D. Mark Estes, Ayumi Hirano, Volker T. Heussler, et al., Expression and Biological Activities of Bovine Interleukin 4: Effects of Recombinant Bovine Interleukin 4 on T Cell Proliferation and B Cell Differentiation and Proliferation in Vitro, Cellular Immunology 163(2) (1995) 268-279.

[6] M. J. Robinson, D. M. Tarlinton, IL-21 promotes plasmablast differentiation independently of proliferation in vitro, Immunology letters 273 (2025) 106980.

[7] A. Viola, F. Munari, R. Sanchez-Rodriguez, et al., The Metabolic Signature of Macrophage Responses, Frontiers in immunology 10 (2019) 1462.

[8] C. Shen, C. Liu, Z. Zhang, et al., PD-1 Affects the Immunosuppressive Function of Group 2 Innate Lymphoid Cells in Human Non-Small Cell Lung Cancer, Frontiers in immunology 12 (2021) 680055.

[9] C. Zhou, C. Lu, H. Pu, et al., TRAF6 promotes IL-4-induced M2 macrophage activation by stabilizing STAT6, Molecular immunology 127 (2020) 223-229.

[10] Y. Li, Y. Xie, J. Hao, et al., ER-localized protein-Herpud1 is a new mediator of IL-4-induced macrophage polarization and migration, Experimental cell research 368(2) (2018) 167-173.

[11] S. Zhou, T. Zhao, X. Chen, et al., Runx1 Deficiency Promotes M2 Macrophage Polarization Through Enhancing STAT6 Phosphorylation, Inflammation 46(6) (2023) 2241-2253.

[12] X. Wang, S. Gao, L. Song, et al., Astragaloside IV antagonizes M2 phenotype macrophage polarization-evoked ovarian cancer cell malignant progression by suppressing the HMGB1-TLR4 axis, Molecular immunology 130 (2021) 113-121.

[13] B. D. Clarkson, R. K. Johnson, C. Bingel, et al., Preservation of antigen-specific responses in cryopreserved CD4(+) and CD8(+) T cells expanded with IL-2 and IL-7, Journal of translational autoimmunity 5 (2022) 100173.

[14] A. M. Dittrich, H. C. Chen, L. Xu, et al., A new mechanism for inhalational priming: IL-4 bypasses innate immune signals, Journal of immunology (Baltimore, Md. : 1950) 181(10) (2008) 7307-15.

[15] P. Choi, H. Reiser, IL-4: role in disease and regulation of production, Clinical and experimental immunology 113(3) (1998) 317-9.

[16] C. Liu, X. Huang, S. Li, et al., M2 macrophage-derived exosomes reverse TGF-β1-induced epithelial mesenchymal transformation in BEAS-2B cells via the TGF-βRI/Smad2/3 signaling pathway, European journal of medical research 30(1) (2025) 271.

[17] Z. Ye, J. Pan, Z. Yin, et al., Dendritic cells infected with recombinant adenoviral vector encoding mouse fibroblast activation protein-α and human livin α exert an antitumor effect against Lewis lung carcinoma in mice, Immunity, inflammation and disease 11(9) (2023) e1011.



https://wap.sciencenet.cn/blog-3646309-1524367.html

上一篇:AbMole小课堂丨重组ANGPTL4蛋白在结肠炎、肺损伤、帕金森模型、肿瘤等动物模型中的应用
收藏 IP: 180.165.16.*| 热度|

0

该博文允许注册用户评论 请点击登录 评论 (0 个评论)

数据加载中...

Archiver|手机版|科学网 ( 京ICP备07017567号-12 )

GMT+8, 2026-3-4 18:49

Powered by ScienceNet.cn

Copyright © 2007- 中国科学报社

返回顶部