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转录因子DNA结合与调控靶标重叠率低

已有 312 次阅读 2025-7-3 12:26 |个人分类:科普|系统分类:科普集锦

转录因子DNA结合与调控靶标重叠率低 

在任何真核细胞中表达的DNA序列特异性转录因子的子集决定了其基本特性,包括基因表达模式、细胞身份以及对内在信号和环境变化的反应。转录因子通过与辅因子或基础转录机制的直接相互作用来调控转录起始或延长,或指导染色质修饰。大规模筛选表明,在没有其他TF的情况下,只有一小部分哺乳动物TF具有很强的激活功能,这意味着大多数TF协同以调控转录。在某些系统中,TF的组合显示出很强的协同功能,但更常见的是,它们似乎是叠加的或只有适度的合作。 

为了更好地理解单个转录因子的全基因组作用,重要的是要确定它们的功能和重要性在不同基因上的变化,以及变异如何取决于在这些相同调控元件上起作用的其他转录因子、靶启动子类型(组成型或诱导型)和单个基因的染色体背景。尽管有明确的例子表明,单个TF具有强烈的激活或抑制功能,可以调控附近的基因,但早期尝试将TF结合与调控靶点相关联的全系统方法产生了令人困惑的结果。例如,TF基因缺失或小干扰RNA敲除与mRNA分析相结合表明,非功能TF结合和TF在不同基因上具有阳性或阴性作用。然而,这些研究大多依赖于稳态RNA分析,并且是在缺乏TF的长期生长后进行的,因此很难区分直接效应和间接效应。 

酵母是研究TF特异性、协同性和功能的优秀模型系统。尽管酵母缺乏已知的长程增强子,许多转录机制与高等真核生物共享。酵母总共只有大约150TF(不到人类的十分之一),使其适合进行全面的大规模结合和功能比较。大量的遗传和生化数据可用于许多TF-TF相互作用和TF调控靶标,以及共同调控基因集的TF。酵母蛋白编码基因已根据TFIIDSAGABdf1/2和称为Tail的介体激活物结合结构域(MED)等因子的辅因子依赖性进行了分类。大多数酵母基因的转录依赖于TFIIDBdf1/2TFIID依赖基因),其中许多基因是组成型表达的,而大多数受调控基因的一个较小子集的转录被称为辅因子(或辅激活因子)冗余,可以使用TFIIDSAGA。转录因子如何促进辅因子特异性,以及某些转录因子是否对基因类别具有特异性,这些都是重要的悬而未决问题。例如,据估计,约60%的酵母TF含有结合MED尾部的酸性激活结构域,但只有约6%基因的转录对尾部的快速损耗敏感。最近,Mahendrawada等人利用了一种全面方法来探索转录因子的全基因组作用,绘制了126个转录因子的DNA位置和表达靶标(图1)。结果表明:与预期相反,很少有TF具有专门的激活或抑制作用,而且大多数TF具有双重功能。尽管几乎所有的蛋白质编码基因都受一个或多个转录因子的调控,但转录因子结合和基因调控之间的重叠很有限。许多转录因子的快速损耗也揭示了许多远离可检测的转录因子结合位点的调控靶标,这暗示了意想不到的调控机制。总之,改研究对TF功能进行了全面的调查,并深入了解了单个细胞类型中表达的TF之间的相互作用,以及它们如何对复杂的基因调控程序做出贡献。 

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1 酵母TF结合的全基因组图谱。a,示意图显示了178个因子的功能类别,通过ChEC-seq成功分析了DNA结合。b,描绘ChEC测定的TF结合事件频率与TSS距离的直方图。红色虚线表示-400+200 ,其中TSS包括所有TF结合峰的77%c,显示ChEC-seq检测到的TF结合靶标分布的直方图,绘制为每个TF的结合靶标数量。d、在CisBP数据库中列出的121个具有DNA序列motif的酵母TF的蛋白质编码基因启动子中观察到TF结合位点,这些启动子具有和不具有已知的DNA序列motife 散点图显示了TF在非motif与含motif结合位点的ChEC信号中值。在含有motif的结合位点表现出≥1.5中值信号增加的转录因子,并显示出显著差异(单侧Mann-Whitney U检验,P ≤ 0.05) motif和非motif结合位点之间用蓝色表示。f,热图表示178个因子与5467个启动子的二元结合事件,通过无监督k均值聚类。黄色条表示绑定,深蓝色表示无绑定。 右侧的色带表示存在于染色体结构域(L-CID)边界(蓝色)附近的基因。红线表示聚类边界。g、每个结合聚类中所有CRTFIID基因的百分比 

参考文献

[1] Mahendrawada L, Warfield L, Donczew R, Hahn S. Low overlap of transcription factor DNA binding and regulatory targets. Nature. 2025 Apr 16. doi: 10.1038/s41586-025-08916-0.   

以往推荐如下:

1. 分子生物标志物数据库MarkerDB

2. 细胞标志物数据库CellMarker 2.0

3. 细胞发育轨迹数据库CellTracer

4. 人类细胞互作数据库:CITEdb

5. EMT标记物数据库:EMTome

6. EMT基因数据库:dbEMT

7. EMT基因调控数据库:EMTRegulome

8. RNA与疾病关系数据库:RNADisease v4.0

9. RNA修饰关联的读出、擦除、写入蛋白靶标数据库:RM2Target

10. 非编码RNA与免疫关系数据库:RNA2Immune

11. 值得关注的宝藏数据库:CNCB-NGDC

12. 免疫信号通路关联的调控子数据库:ImmReg

13. 利用药物转录组图谱探索中药药理活性成分平台:ITCM

14. AgeAnno:人类衰老单细胞注释知识库

15. 细菌必需非编码RNA资源:DBEncRNA

16. 细胞标志物数据库:singleCellBase

17. 实验验证型人类miRNA-mRNA互作数据库综述

18. 肿瘤免疫治疗基因表达资源:TIGER

19. 基因组、药物基因组和免疫基因组水平基因集癌症分析平台:GSCA

20. 首个全面的耐药性信息景观:DRESIS

21. 生物信息资源平台:bio.tools

22. 研究资源识别门户:RRID

23. 包含细胞上下文信息的细胞互作数据库:CCIDB

24. HMDD 4.0miRNA-疾病实验验证关系数据库

25. LncRNADisease v3.0lncRNA-疾病关系数据库更新版

26. ncRNADrug:与耐药和药物靶向相关的实验验证和预测ncRNA

27. CellSTAR:单细胞转录基因组注释的综合资源

28. RMBase v3.0RNA修饰的景观、机制和功能

29. CancerProteome:破译癌症中蛋白质组景观资源

30. CROST:空间转录组综合数据库

31. FORGEdb:候选功能变异和复杂疾病靶基因识别工具

32. Open-ST3D高分辨率空间转录组学

33. CanCellVar:人类癌症单细胞变异图谱数据库

34. dbCRAF:人类癌症中放射治疗反应调控知识图谱

35. DDID:饮食-药物相互作用综合资源可视化和分析

36. SCancerRNA:肿瘤非编码RNA生物标志物的单细胞表达与相互作用资源

37. CancerSCEM 2.0:人类癌症单细胞表达谱数据资源

38. LncPepAtlas:探索lncRNA翻译潜力综合资源

39. SPATCH:高通量亚细胞空间转录组学平台

40. MirGeneDB 3.0miRNA家族和序列数据库

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